益生元

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益生元是非消化性膳食碳水化合物,如纤维和抗性淀粉,是有益肠道细菌的“食物”。1

益生元的正式定义是“一种可被选择性地发酵、引起胃肠道微生物群的成分和/或活性发生特定变化,从而有益于宿主健康的成分”。2补充益生元的最终目的是增强肠道微生物群的功能:然而,益生元本身即具有有益的效果,包括改善肠道本身的健康。

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益生元特征

所有已知的益生元都是可发酵、不可消化的碳水化合物。益生元可使肠道微生物群的组成和/或活性发生特定变化,从而有益于宿主的健康。

成为益生元的食物成分必须符合以下标准:

  • 抵抗消化、吸收和分解,直到到达结肠
  • 利用结肠中的微生物群进行发酵
  • 选择性地只刺激有益菌的生长。2
益生元

Purina 使用纯化的菊粉、小麦糊粉和菊苣根 作为益生元。

菊粉是用热水从菊苣根中提取的,通过进一步加工形成低聚果糖。大蒜、洋葱、朝鲜蓟和韭菜中也含有天然高浓度的菊粉。

益生元

小麦糊粉是小麦籽粒的麸皮和胚乳之间的单层细胞。

益生元背后的科学

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犬和猫缺乏分解菊粉和低聚果糖等益生元成分的化学键所需的酶。然而,宠物结肠中的微生物群具有通过发酵破坏这些化学键的能力。这会产生短链脂肪酸 (SCFA),如丁酸、丙酸和乙酸,从而降低肠道 pH 值。

这种降低的 pH 值使益生元具有许多有益健康的作用。酸性环境不利于致病菌的生长,同时也促进了宠物对所吃食物中矿物质的吸收。此外,在这种酸性环境中,蛋白质消化产生的潜在有害氨会转化为铵离子,立即排出体外,而不是在肝脏中被吸收解毒,然后以尿素形式在尿液中排泄。这可能对肝功能或肾功能下降的宠物有所帮助。35

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SCFA 对肠道细胞本身也有直接的有益作用:

  • 丁酸是结肠细胞的主要能量来源。它能够滋养结肠,增加肠粘膜厚度,增加绒毛高度,并改善隐窝深度6,7
  • 这种肠道表面积的增加提高了营养吸收能力
  • 丁酸具有抗癌和抗炎特性,可促进炎症性肠病和溃疡性结肠炎患者的结肠愈合。8

Purina 的研究

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Purina 已发表了大量关于菊苣及其对粪便微生物群组成、粪便质量和消化健康的有益影响的研究。9–14

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在一项为期 9 年的研究中,77% 喂食菊苣益生元的猫显示双歧杆菌和乳杆菌(有益类型的细菌)增加,和/或产气荚膜梭菌(潜在致病菌)减少。15在同一研究中,喂食含有益生元的特定营养素混合物的猫比喂食对照食物的猫平均寿命延长 1 年。

展望未来,益生元可作为一种工具来 创建一种更受控或更理想的 肠道微生物群组成,这种组成可以与特定的生理条件 相关联 ,以改善 宠物健康。

需记住的要点

  • 益生元是非消化性碳水化合物,由肠道中的有益菌发酵。
  • Purina 研究了菊苣等益生元对肠道健康的有益作用。
  • 发酵引起的变化,如肠道 pH 值降低和 SCFA 的产生,可促进肠道健康。
  • 将来,益生元可以用作创建更有利的肠道微生物群组成的工具。

了解更多信息

1.Valcheva, R., & Dieleman, L. A. (2016).Prebiotics: Definition and protective mechanisms.Best Practice & Research Clinical Gastroenterology, 30, 27–37.

2.Roberfroid, M. (2007).Prebiotics: The concept revisited.Journal of Nutrition, 173(3) Suppl. 2, 830S–837S.

3.Pinna, C., & Biagi, G. (2014).The utilization of prebiotics and synbiotics in dogs.Italian Journal of Animal Science, 13, 169–178.

4.Hesta, M., Janssens, G. P., Debraekeleer, J., & De Wilde, R. (2001).The effect of oligofructose and inulin on faecal characteristics and nutrient digestibility in healthy cats.Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition (Berl), 85, 135–141.

5.Younes, H., Garleb, K., Behr, S., Rémésy, C., & Demigné, C. (1995).Fermentable fibers or oligosaccharides reduce urinary nitrogen excretion by increasing urea disposal in the rat cecum.Journal of Nutrition, 125, 1010–1016.

6.Buddington, R. K., & Sunvold, G. D. (1998).Fermentable fiber and the gastrointestinal tract ecosystem.Recent Advances in Canine and Feline Nutrition: 1998 Iams Nutrition Symposium Proceedings, pp. 449–461.

7.National Research Council (2006).Energy.In: Nutrient Requirements of Dogs and Cats. pp. 28–48.Washington DC: National Academies Press.

8.Knudsen, K., Serena, A., Canibe, N., & Juntunen, K. (2003).New insights into butyrate metabolism.Proceedings of the Nutrition Society, 62, 81–86.

9.Patil, A. R., Czarnecki-Maulden, G., & Dowling, K. E. (2000).Effect of advances in age on fecal microflora of cats.Federation of American Societies for Experimental Biology Journal, 14(4), A488.

10.Patil, A. R., Carrion, P. A., & Holmes, A. K. (2001).Effect of chicory supplementation on fecal microflora of cats.Federation of American Societies for Experimental Biology Journal, 15(4), A288.

11.Czarnecki-Maulden, G. L. (2001).Microflora and fiber in the GI tract: Helping the good guys.Veterinary Forum, 18(9), 43–45.

12.Czarnecki-Maulden, G. (2000).The use of prebiotics in prepared pet food.Veterinary International, 2(1), 19–23.

13.Czarnecki-Maulden, G. L., & Russell, T. J. (2000a).Effect of chicory on fecal microflora in dogs fed soy-containing or soy-free diets.Federation of American Societies for Experimental Biology Journal, 14(4), A488.

14.Czarnecki-Maulden, G. L., & Russell, T. J. (2000b).Effect of diet type on fecal microflora in dogs.Federation of American Societies for Experimental Biology Journal, 14(4), A488.

15.Cupp, C. J., Kerr, W. W., Jean-Phillipe, C., Patil, A. R., & Perez-Camargo, G. (2008).The role of nutritional interventions in the longevity and maintenance of long-term health in aging cats.International Journal of Applied Research in Veterinary Medicine, 6, 69–81.